血清对转染的影响时候可以用加血清的培养基吗

请问大家 用Lipofectamine? 2000 转染细胞时培养夜里面到底加不加血清(血清,转染细胞,质粒,无血清培养液) - 细胞实验 - 生物秀
标题: 请问大家 用Lipofectamine? 2000 转染细胞时培养夜里面到底加不加血清(血清,转染细胞,质粒,无血清培养液)
摘要: [请问大家 用Lipofectamine&
转染细胞时培养夜里面到底加不加血清(血清,转染细胞,质粒,无血清培养液)] 请问大家,用Lipofectamine 2000 转染细胞时,除了质粒和Lipofectamine 2000 用无血清培养液稀释外,细胞培养液是不是也必须无血清,请做过转染的战友给点建议,加不加有什么差别吗?再有6小时可以换液了吧(10%DMEM),换不换有差别吗,此时可以加双抗了吗。谢谢大家。 关键词:[血清 转染细胞 质粒 无血清培养液 有差别 转染 细胞培养液]……
请问大家,用Lipofectamine? 2000 转染细胞时,除了质粒和Lipofectamine? 2000 用无血清培养液稀释外,液是不是也必须无,请做过转染的朋友给点建议,加不加有什么差别吗?再有6小时可以换液了吧(10%DMEM),换不换有差别吗,此时可以加双抗了吗。谢谢大家。
回复稀释时一定不要加和双抗,培养液里可以加血清,加与不加没什么大的区别。至于换液根据复合物对细胞的毒性而定,有的转染后对细胞产生毒刑,所以最好要换液,换液可以从转染后0.5-24小时。如果以后要用抗性(如G418)筛选那么,最好不要加双抗了。回复如果以后要用抗性(如G418)筛选那么,最好不要加双抗了。 这个是什么原因啊!?回复稀释时一定不要加血清和双抗,培养液里也不加血清,并且转染时用PBS清洗细胞两遍,已消除血清对转染的抑制效果,6小时后补加血清,我是这么做的,效果不错.回复谢谢大家.zxzxzxzxzx ,请问补加血清时是不是滴几滴就可以,你换液了吗,回复转染的时候不加血清。但是转染过后最好换液,换成完全培养基吧。反正换液跟补加血清相比也麻烦不了多少,而且脂质体对细胞还是有一定的毒性的,换掉它比较好。回复我转染时用OPTI-MEM无血清培养基 一般4-5小时后换为完全培养基(血清浓度5%) 48小时后在进行筛选 效果不错回复同问,为何用G148筛选不要加双抗啊?难道双抗对细胞状态有影响?回复大家怎么理解这句话:Lipofectamine? 2000说明书上的:4)incubate the cells at 37°C in a CO2 incubator for 24-48 hours until they are ready to assay for transgene expression. It is not necessary to remove the complexes
however, growth medium may be replaced after 4-6 hours without loss of transfection activity. 是不是可以在24-48小时中换培养液?回复我也曾就此问题请教过一个公司,他们的技术支持这样告诉我:在稀释LIPOFECTINE和质粒DNA时,一定要用无血清和无(antibiotic)的培养基,而且培养基的成分越简单越好,因为这个过程只是为了让LIPFECTINE 包裹DNA,血清影响LIPOFECTINE 对DNA包裹。只要包裹好了,有血清应该对转染的过程不是很大。回复大家怎么理解这句话:Lipofectamine? 2000说明书上的:4)incubate the cells at 37°C in a CO2 incubator for 24-48 hours until they are ready to assay for transgene expression. It is not necessary to remove the complexes
however, growth medium may be replaced after 4-6 hours without loss of transfection activity. 是不是可以在24-48小时中换培养液 转染后6小时或更久(根据细胞状态而定,一般1 /4~1/5细胞形态改变既可),可以更换完全培养基。再24~48h可以更换含筛选(antibiotic)的完全培养基,这个时间也依赖于细胞的状态(部分细胞开始有生长、伸展的迹象时)。此外,加抗生素(antibiotic)时建议不要换液,直接加到培养液中既可,因此时细胞较脆弱,尽量减少损伤)回复转染的时候培养液里不加血清,并且转染前用PBS或hank"s清洗细胞两遍。尽量的去除血清。血清对转染效率有抑制作用。转染过后最好换液,换成完全培养基。而且转染时培养基内不能有抗生素(antibiotic)。脂质体对细胞有一定的毒性的,换掉它比较好。回复看了上面的讨论 作为转染新手的我 非常想知道另外一个问题 就是根据说明书,转染之前需要更换培养基进行刺激,那么更换的培养基中是否是完全培养基还是物抗无血清的培养基呢?非常感谢
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转染的时候能否用加血清的培养基
转染的时候能否用加血清的培养基
来源:互联网
点击次数:178
总有一种转染方法适合你
ayao0问:转染
的时候可以用加血清的培养基吗
前几天学习做细胞脂质体转染
,看师姐是用的加血清的培养基,整个过程比以前的方法简单方便了很多。
不用过四个小时就去换液,可以过了48个小时看转染
效率很不好,以前也有人用这种方法做过,很成功。
到底这种新的方法行不行的通,做的时候需要注意哪些问题
monica912认为:
这种方法是完全可以的,我经常这样做,没问题的。
后最好4~6小时或过夜就换液,目的就像楼上说的减少脂质体对细胞的损伤。换液时可以用无血清的培养液洗一下细胞(一定要轻),然后再加培养液。
biologychem认为:
时最好换无血清培养基,因为这样可以让细胞饥饿一下,有助于随后转染时细胞对脂质体-质粒复合物的摄取,过4-8小时再换为正常培养基,减少脂质体对细胞的毒性作用,这样比较好.
pazj指出:
我的做法和biologychem 的一样,转染率很高的,我觉得很不错的,
转染时用血清培养基的这种方法,我没试过。
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