scfv恐怖分子为什么不怕死40多kd

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特异性抗细胞表面分子单链抗体的分离和鉴定
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作者:许静 吴立华 徐洁 刘俊霞 孟磊 何一心 宋增璇 【摘要】
目的:从抗KG1a细胞的噬菌体展示文库中分离和鉴定抗造血干/祖细胞表面分子单链抗体(scFv),克隆其基因并研究其对应抗原在不同细胞表面的分布。方法:用完整的K
  2.2& KG1a+ phagescFv单克隆对其他细胞系的识别&  64个阳性单克隆分别与8个造血祖细胞阶段细胞系做间接免疫荧光反应,其中41个单克隆与8个细胞系均呈阳性反应,15个单克隆识别7个细胞系而不识别BJAB细胞系,8个单克隆与8个细胞系均呈阴性反应(表1)。结果显示有3种类型scFv,它们的细胞结合谱为9(+)、8(+)1(-)和1(+)8(-)。表1& phagescFv的细胞结合谱(略)  2.3& phagescFv单克隆的DNA序列分析&  从与细胞结合谱不同的phagescFv中分别挑取2个克隆作DNA序列测定。测序结果按Kabat编号标明scFv核苷酸排列顺序及其演绎的氨基酸残基排列顺序,比较各个scFv的互补决定区(CDR)[6]。结果3个克隆的DNA序列与以前报导的C4、C131和C193相同;1个克隆的互补决定区与以前报导的C194相差2个氨基酸残基;2个克隆C95、H1的DNA序列完全不同于以前报导(表2,3)[4]。表2& scFv克隆的重链互补决定区氨基酸残基序列(略)表3& scFv克隆的轻链互补决定区氨基酸残基序列(略)  2.4& 免疫印迹结果分析&  免疫印迹结果显示scFvSAC95 和scFvSAH1融合蛋白能识别和结合KG1a细胞膜蛋白中的抗原带,它们的表观分子量分别约为34、22 kD(图2)。  3& 讨论&&& 细胞表面分子是鉴别细胞种类及其发育阶段的标志,也有一些是调控细胞行为的信号途径端口。近年来,在细胞表面分子的发现及其信号途径和调控分子应用方面都有长足的进展,尤其在干细胞领域,细胞表面分子已逐渐成为预测细胞分化潜力的依据。但是由于细胞表面分子的多样性,遗传和突变造成的疾病相关分子的瞬时表达等原因,使细胞表面分子领域的研究存在很大的探索空间。人们期待新的细胞表面分子标志来鉴别各种不同发育阶段的干/祖细胞用于移植,也期待新的调控细胞行为的生物分子或药物用于临床治疗。&&& 发现细胞表面分子的经典方法依赖抗体,30年来用杂交瘤技术制备的单克隆抗体在细胞表面分子的研究中发挥了巨大作用,至今仍在使用。但是一些表达水平很低的细胞表面分子,在细胞表面的浓度很低,很难用杂交瘤技术获得其相应的单克隆抗体,但它引发的抗体基因存在于免疫的脾细胞中,可以用基因重组和噬菌体表面展示技术获得其单克隆单链抗体。我们已采用这项技术成功构建了抗KG1a细胞单链抗体库[3]。KG1a细胞分化程度很低,具有造血干细胞特征,其表面具有造血细胞发育、分化早期阶段相关的多种标志分子及细胞因子受体或与干细胞迁移和归巢有关的粘附分子,本研究用KG1a细胞吸附富集抗KG1a细胞表面分子噬菌体库后再用CD44单抗作引导选择,使KG1a+phagescFv达到44.4%,与我们以前报道的结果近似,说明这种分离方法高效且稳定[4]。本文分出的6个特异性phagescFv单克隆中有3个克隆的DNA序列与以前报道的完全相同,1个克隆仅在CDR中有2个氨基酸残基不同,2个克隆的DNA序列完全不同于以前报道,结果提示CD44和CD34分子在KG1a细胞表面的定位距离不远。DNA序列测定,结果显示C95和H1两个克隆的CDR都很独特,推测它们可能识别不同的抗原,免疫印迹结果证实了我们的推断。&&& 从phagescFv文库中筛选特异性scFv单克隆是制备单克隆抗体的新途径,从中可以筛选出许多具有不同特异性phagescFv单克隆,用此方法获得的单克隆scFv一级结构明确,利于基因重组制备双功能抗体用于临床治疗[7,8]。我们已筛选鉴定7个单克隆scFv,其中6个克隆通过基因重组技术构建成具有碱性磷酸酶(scFvAP)或链霉亲和素(scFvSA)标记的双特异性抗体[9],这为分离和鉴别新的细胞表面分子,深入研究它们的生物学特性和功能奠定了坚实的基础。【参考文献】&   1 Colcher D, Pavlinkova C, Beresford G et al. Singlechain antibodies in pancreatic cancer.\[J\]. Ann N Y Acad Sci,280.  2 Bakker A B, Oudenrijn S,Bakker A Q et al.Ctype lectinlike molecule1:a novel myeloid cell surface marker associated with acute myeloid leukemia\[J\].Cancer Res,):.  3 隋建华,宋增璇,佘 鸣 et al. KG1a细胞免疫小鼠脾细胞scFv噬菌体展示文库的构建及其表达\[J\].中国免疫学杂志,):318321.  4 刘俊霞,孟 磊,许 静 et al. 引导选择抗细胞表面分子单链抗体\[J\].中国科学院学报,):405409.  5 许 静,李文平,隋建华 et al. 单链抗体分子与链亲和素融合蛋白的制备\[J\].中国实验血液学杂志, ):120122.  6 Johnson G, Wu T T. Kabat database and its applications :30 years after the first variability plot\[J\]. Nucleic Acids Res,218.  7 Yoshida S,Kobayashi T,Matsuoka H et al. Tcell activation and cytokine production via a bispecific single-chain antibody fragment targeted to bloodstage malaria parasites\[J\].Blood,02305.  8 Loffler A, Kufer P,Lutterbuse R et al. A recombinant bispecific singlechain antibody, CD19
CD3,induces rapid and high lymphomadirected cytotoxicity by unstimulated T lymphocytes\[J\]. Blood,82121.  9 许 静,刘俊霞,李 侠 et al. 单链抗体碱性磷酸酶融合蛋白的制备\[J\].中国免疫学杂志,):8688.
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抗人P185-&erbB2-scFv-Fc-IL-2融合蛋白抗肿瘤作用和机制的实验研究
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3秒自动关闭窗口抗莪术醇单链抗体的构建及其在大肠杆菌中的表达--《桂林医学院》2014年硕士论文
抗莪术醇单链抗体的构建及其在大肠杆菌中的表达
【摘要】:目的:利用抗体基因工程的方法得到高亲和力的抗莪术醇单链抗体蛋白。
方法:利用RT-PCR及分子克隆的技术,从分泌抗莪术醇单克隆抗体的杂交瘤细胞中克隆编码抗体重链及轻链的基因;利用重叠延伸PCR的方法构建抗莪术醇单链抗体基因,并将该基因克隆到大肠杆菌表达载体中;在细菌中诱导表达抗莪术醇单链抗体,并利用ELISA的方法测定抗莪术醇单链抗体与莪术醇的结合能力。
结果:利用RT-PCR的方法获得了抗体轻链及重链Fab片段基因,并克隆在了T载体中,长度为620bp左右;测序后序列分析表明我们获得的抗体基因为全新的抗体基因,在GeneBank中没有报道。利用重叠延伸PCR的方法将轻链和重链基因的可变区通过多聚甘氨酸接头连接为单链抗体,所得单链抗体基因长度为750bp左右。利用PCR克隆的方法将单链抗体基因3末端加入Flag标签序列,并克隆到细菌表达载体pET21a中得到质粒pET21a ScFvFlag6XHis(pET21ScFvFH),测序结果表明基因表达框正确,没有发生突变。将质粒转化到大肠杆菌BL21(DE3),利用IPTG诱导2小时后,Westernblot检测到ScFv的表达,大约有95%的ScFv蛋白存在于包涵体,5%的ScFv蛋白为有活力的可溶性蛋白,分子量为34KD。利用ELISA检测到ScFv蛋白高特异性抗莪术醇活力。
结论:此项研究工作利用基因工程的系列方法,从分泌抗莪术醇的杂交瘤细胞株中成功地构建了抗莪术醇单链抗体基因,并且在细菌中表达出了可溶性单链抗体蛋白,所表达的单链抗体具有高特异性抗莪术醇化合物活力。
【关键词】:
【学位授予单位】:桂林医学院【学位级别】:硕士【学位授予年份】:2014【分类号】:R392【目录】:
中文摘要5-7ABSTRACT7-9英汉缩略词对照表9-11前言11-141 材料与方法14-32 1.1 实验材料14 1.2 主要实验试剂14-15 1.3 主要实验仪器15-16 1.4 主要溶液的配制16-17 1.5 引物17-19 1.6 实验方法19-322 结果32-39 2.1 杂交瘤细胞总 RNA 的提取32 2.2 RT-PCR 法扩增编码抗莪术醇抗体基因片段32-33 2.3 抗莪术醇抗体轻链及重链基因克隆,测序,序列分析33-34 2.4 抗莪术醇 ScFv 的构建34-37 2.5 抗莪术醇 ScFv 基因的序列分析37 2.6 抗莪术醇 ScFv 在大肠杆菌中表达37-38 2.7 抗莪术醇 ScFv 免疫活性检测38-39讨论39-40结论40-41参考文献41-46综述46-58 参考文献53-58攻读硕士期间发表的学术论文目录58-59致谢59
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