电阻抗测量法快速检测鲜奶中大肠菌群--《现代商检科技》1998年03期
电阻抗测量法快速检测鲜奶中大肠菌群
【摘要】：电阻抗测量法快速检测鲜奶中大肠菌群李小燕（深圳商检局）近三十年来，随着分析微生物学领域的迅速发展，微生物快速检测技术如气相色谱、生物发光、放射测量和电阻抗测量等方法［１］，冲破了百年来传统手工操作的纯培养方法，使微生物分析检测技术进入到一个新的层次。...
【作者单位】：
【关键词】：
【分类号】：F768.26,TS252.2【正文快照】：
电阻抗测量法快速检测鲜奶中大肠菌群李小燕（深圳商检局）近三十年来，随着分析微生物学领域的迅速发展，微生物快速检测技术如气相色谱、生物发光、放射测量和电阻抗测量等方法［１］，冲破了百年来传统手工操作的纯培养方法，使微生物分析检测技术进入到一个新的层次。电
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京公网安备74号分光光度法连续测定土壤中铁和钛的研究--《安徽农业科学》2008年14期
分光光度法连续测定土壤中铁和钛的研究
【摘要】：[目的]研究分光光度法连续测定土壤中铁和钛的方法,探讨该方法的最佳条件。[方法]在铁、钛标准溶液中加入铁钛试剂,稀氨水滴定pH值,静置显色,在340～800 nm处进行光谱扫描,确定连续测定铁和钛含量的试验参数。并在试验确定参数条件下进行土壤样品分析。[结果]结果表明,以钛铁试剂为显色剂,可在同一份土壤样品中于560 nm处测定铁、于380 nm处测定钛,实现了在同一土壤消解体系中连续测定铁和钛含量的目的,铁含量在0～4 mg/L范围内服从比尔定律,线性回归方程为-y=0.070 9 x,相关系数r=0.999 3,表观摩尔吸光系数5κ60=4.24×104L/(mol.cm);钛含量在0～0.3mg/L范围内服从比尔定律,线性回归方程为-y=0.2905x,相关系数r=0.998 6,表观摩尔吸光系数3κ80=1.46×104 L/(mol.cm)。[结论]该方法简便,选择性好,灵敏度高。用于土壤中铁和钛的测定,结果与常规方法分析结果相符;样品标准加入回收率分别为91.4%～109.1%和91.0%～103.8%,相对标准偏差分别为0.58%～0.70%和1.10%～1.80%(n=6)。
【作者单位】：
【关键词】：
【基金】：
【分类号】：S153【正文快照】：
铁是植物生长发育必需的营养元素,参与细胞的氧化还原过程,在植物细胞的代谢和植物的呼吸过程中具有重要的作用。它对植物叶绿素的形成起催化作用,缺铁植物即出现黄叶病。钛为植物生长发育的有益元素或准必需元素[1]。因此,研究测定土壤中铁和钛的分析方法具有重要的意义。土
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食品中抗草甘膦转基因大豆实时pcr检测方法的建立与应用
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3秒自动关闭窗口有机磷农药草甘膦降解菌的筛选、分离及其鉴定--《四川农业大学》2010年硕士论文
有机磷农药草甘膦降解菌的筛选、分离及其鉴定
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有机磷农药因其经济、高效、使用方便等特点,是目前使用最广泛的农药品种之一。对于防治病虫草害、保证农作物产量起到了巨大的作用。我国是农药生产大国,不仅自身需求量很大,而且还远销东南亚多个国家。其中有机磷农药有200多种,产量占全国农药总量的50%以上,占世界农药总量的30%。
微生物是生物修复的重要生物资源。利用微生物产生的降解酶降解处理环境中有机磷农药的方法,已显示出良好的应用前景,是近年来研究有机磷农药降解的主要方向。因此,本实验的目的就是寻找出对有机磷农药降解效果好的优势菌种,对其进行生理生化分析和鉴定,同时,探索优化降解有机磷农药的最佳条件,为深入研究有机磷降解菌制剂做好前期准备工作。
作者从四川贝尔农药厂污水处理池中采集活性污泥样品,对其进行解磷细菌的分离和筛选。根据解磷圈的大小和菌液浓度值,初筛获得了26株解磷细菌；通过钼锑抗比色法,从降解性能和稳定性能两方面考率,复筛出两株降解有机磷农药草甘膦性能较好且稳定的菌株BR13和BR57,其降解率分别为60.20%和57.67%。
对这两株菌进行生理生化试验和16S rDNA序列分析,结果表明BR13为恶臭假单胞菌,BR57为肠肝菌科。通过对这两株菌降解有机磷农药影响因素的一系列分析,表明菌株BR13和BR57对有机磷农药草甘膦的降解具有遗传稳定性,能较好的降解草甘膦。通过单因素及正交实验,确定菌株BR13降解草甘膦的最佳培养组合为：蔗糖2.5%、草酸铵0.1%、培养温度28℃、摇床转速180r/min。菌株BR57降解草甘膦的最佳培养组合为：蔗糖1%、草酸铵0.1%、培养温度30℃、摇床转速120r/min。
【关键词】：
【学位授予单位】：四川农业大学【学位级别】：硕士【学位授予年份】：2010【分类号】：X172;X592【目录】：
Abstract5-7
符号说明7-11
1. 文献综述11-21
1.1 农药的简介11-12
1.2 有机磷农药的概况12-13
1.3 有机磷农药的降解机理13-14
1.4 降解有机磷农药的微生物种类14-15
1.5 降解有机磷农药微生物的筛选及鉴定15-16
1.6 影响有机磷农药降解的因素16-18
1.6.1 微生物自身特性16
1.6.2 环境因素16-17
1.6.3 生物化学因素17-18
1.7 有机磷农药的检测方法18-21
1.7.1 光谱法18
1.7.2 色谱法18-19
1.7.3 酶抑制法19-20
1.7.4 免疫法20-21
2. 绪论21-23
2.1 本研究的目的及意义21-22
2.2 研究的主要内容22
2.3 技术路线22-23
3. 材料与方法23-34
3.1 主要药品及试剂23
3.2 仪器设备23-24
3.3 培养基的配制24
3.4 实验方法24-34
3.4.1 样品采集24-25
3.4.2 菌株的分离和筛选25-27
3.4.2.1 富集驯化25
3.4.2.2 分离纯化25
3.4.2.3 初筛25-26
3.4.2.4 复筛26-27
3.4.3 菌株的鉴定27-30
3.4.3.1 菌株形态特征27
3.4.3.2 生长曲线的测定27
3.4.3.3 生理生化特征的测定27-29
3.4.3.4 分子生物学鉴定29-30
3.4.4 菌株降解有机磷农药影响因素的研究30-34
3.4.4.1 菌株对草甘膦的耐受性研究30
3.4.4.2 菌株降解草甘膦遗传稳定性的研究30-31
3.4.4.3 菌株降解草甘膦的动态研究31
3.4.4.4 碳源对降解率的影响31
3.4.4.5 氮源对降解率的影响31
3.4.4.6 培养基初始pH对降解率的影响31-32
3.4.4.7 摇床转速对降解率的影响32
3.4.4.8 培养温度对降解率的影响32
3.4.4.9 接种量对降解率的影响32
3.4.4.10 菌株降解草甘膦影响因素的正交试验32-34
4. 结果与分析34-54
4.1 磷含量标准曲线34
4.2 筛选结果34-38
4.2.1 初筛34-36
4.2.2 复筛36-38
4.3 菌株的鉴定38-42
4.3.1 菌株的形态特征38
4.3.2 生长曲线38-39
4.3.3 生理生化实验39-40
4.3.4 分子生物学鉴定40-42
4.4 菌株降解有机磷农药影响因素的研究42-54
4.4.1 菌株对草甘膦的耐受性42-43
4.4.2 菌株降解草甘膦的遗传稳定性43
4.4.3 菌株降解草甘膦的动态变化43-44
4.4.4 碳源对降解率的影响44-46
4.4.5 氮源对降解率的影响46-48
4.4.6 培养基初始pH值对降解率的影响48-49
4.4.7 摇床转速对降解率的影响49-50
4.4.8 培养温度对降解率的影响50-51
4.4.9 接种量对降解率的影响51-52
4.4.10 正交实验结果52-54
6 结论54-55
7 展望55-56
参考文献56-58
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