质粒不含有的五个碱基分别是什么是什么

就是用纯质粒转化(qiagen提的超纯级)也会出现突变几率多大不好说:)

PS:我还是有点怀疑测序的结果,国内的几家公司其实不好说;不知道你说的突变或缺失等是不是在靠近嘚位置因为你说只有1bp变化,那么为什么不可能是所测片段那个区域GC含量超高DNA过黏,仪器读值错误不要过分相信公司,很多负责的技術员也就是本科水平


倒是如果几次测序结果一致,都错了相同的1bp就是错的也一样,我才认为测序没问题:)

我觉得jacqueslm2001说的很有道理有可能昰测序问题
准备调其中的一些换TAKARA再测下。
  • 政治敏感、违法虚假信息
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内容提示:不相容双质粒共表达囚内皮抑素及简化人纤溶酶原饼环区5

文档格式:PDF| 浏览次数:0| 上传日期: 15:12:44| 文档星级:?????

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在前两期《》、《》(点标题跳轉)中给大家介绍了质粒构建的一些基本知识在本期中将继续为大家带来质粒构建相关的干货,在本文中将为大家简单介绍一下Kozak序列並教大家如何在构建质粒之时添加Flag/HA等标签、如何判断该载体上的酶切位点是否有移码以及如何添加五个碱基分别是什么避免移码等知识

叧外关于质粒构建的相关资料(包括相关软件、常见标签序列等)已经打包上传,需要的可以在公众号内回复“质粒构建”获取下载链接

读完本文您将获得以下技能

2. 懂得如何在构建质粒时添加标签序列;
3. 学会判断载体的移码规则;

先选两个典型问题答疑一下

- 不用保护五個碱基分别是什么咩?嗯

- 限制性内切酶识别特定的DNA序列,除此之外酶蛋白还要占据识别位点两边的若干个五个碱基分别是什么,这些伍个碱基分别是什么对内切酶稳定的结合到DNA双链并发挥切割DNA作用时有很大影响的被称为保护五个碱基分别是什么。

因此在设计PCR引物时為保护5’端外加的酶切位点,故在酶切位点的5’端添加额外的五个碱基分别是什么序列来提高酶切时的活性使酶切更完全。

所以我们构建质粒设计引物时经常会添加保护五个碱基分别是什么不过,现在很多实验室都是使用的快酶所以个人认为添不添加保护五个碱基分別是什么对酶切效率的影响有限,当然这是纯推测结果不放心的可以加上,小编比较任性有时候加有时候不加……

- 再弱弱地问一下:PCR時的模板可不可以直接提DNA?

- 不可以基因组DNA有内含子。而我们抽提的RNA一般都是成熟的mRNA在转录过程中内含子已被剪切掉,当使用逆转录试劑盒反转录出的cDNA并不会含有内含子这种的才是适合用来质粒构建的。当然你有该基因的表达质粒也是可以作为PCR模板的

KOZAK是一个女科学家,她研究过起始密码子AUG周边五个碱基分别是什么定点突变后对转录和翻译所造成的影响并总结出在真核生物中,起始密码子两端序列为:

—— G/N-C/N-C/N-ANNAUGG——GCCACCAUGG、GCCAUGAUGG时,转录和翻译效率最高特别是-3位的A对翻译效率非常重要。该序列被后人称为Kozak序列并被应用于表达载体的构建中。

所谓Kozak规则即第一个AUG侧翼序列的五个碱基分别是什么分布所满足的统计规律,若将第一个AUG中的五个碱基分别是什么AU,G分别标为12,3位則Kozak规则可描述如下:
(1)第4位的偏好五个碱基分别是什么为G;
(2)AUG的5’端约15bp范围的侧翼序列内不含五个碱基分别是什么T;
(3)在-3,-6和-9位置G是偏好五个堿基分别是什么;
(4)除-3,-6和-9位在整个侧翼序列区,C是偏好五个碱基分别是什么

Kozak规则是基于已知数据的统计结果,不见得必须全部满足┅般来说,满足前两项即可

真核引物设计需在AUG前加上GCCACC【注:以上资料来源于百度百科】

例如在中设计的引物如下


加上Kozak序列后:
另外現在的过表达载体都有很强的启动子,加不加Kozak序列对表达效率的影响有限大家可以自行决定是否添加。

在构建过表达载体时常常需要添加诸如Flag、HA、Myc等标签,然而我选的载体上并没有标签怎么办

比如我们在中选择的pcDNA3.0就没有相应的标签,可是我需要添加标签怎么办

这个時候我们就需要在设计引物的时候将标签序列添加到引物上,这样PCR出来的目的基因序列就自带标签了

下面我们就以在PDCD1引物上添加Flag为例进荇讲解:

之前我们设计好的PDCD1引物为:

那么问题来了,我们到底是把标签添加到5’端还是3’端呢在这里先不回答这个问题,我们先看看5’端和3’端分别怎么添加标签吧

注意了,我们这里讲的5’端和3’端是基因序列的5’端和3’端不是引物和其他序列的。


5’端的序列大家可能比较好理解这里需要提醒一下如果加在ATG前面需要在Flag序列前面也加上ATG,而目的基因的ATG 可以删除也可以保留当然建议保留。

3’端当然得加在终止密码子前面了!而对于3’端序列可能有些读者反应不过来为了便于理解,你可以直接将标签序列加在CDS序列的3’端上即将标签序列当做CDS的一部分,这样再设计引物就比较好理解为什么3’端的序列是这样子的了


可能有读者担心,这样引物不就有很大一部分序列无法与模板匹配了么其实根本不用担心,只要引物3’端是结合在模板上的就可以了如下图:


这样我们PCR出来的基因就是带标签的了,只要連接入载体中就可以了

最后我们回到一开始的问题,我们到底是把引物添加到5’端还是3’端呢这个的选择主要是看我们的目的基因,仳如我们选择的PDCD1这个基因就比较特殊!

因为它的5’端是信号肽(Signal Peptide)而信号肽一般都会在蛋白成熟过程中被切割掉,所以如果你加在5’端用Flag抗体做WB是检测不到Flag-PDCD1的!

如何看出来这个基因有信号肽呢?

我们在NCBI上查询CDS时有下图:


你也可以去UniProt上查询该序列信息:


我们可以看出来PDCD1嘚前18个氨基酸组成了信号肽,而当你点击Signal peptide的时候UniProt给了如下解释:

PDCD1序列信息部分如下图:


所以无论是在NCBI上还是UniProt上都可以查到PDCD1的信号肽是要被切割掉的!不能加在5’端,只能加在3’端当然还有一些需要考虑对蛋白功能的影响等来决定标签加在哪一端。

我们在设计引物时基本昰不需要考虑移码的因为ATG后面就是我们的目的基因了。

然而有些载体是自带标签的这个时候一般都要考虑是否移码,当然很多带标签嘚载体也是已经优化好无需考虑移码!

但是,如果我选的载体就是要考虑移码怎么办我们就以下面的载体为例:


我们可以看到,当该載体表达时是从Flag标签的ATG表达的,密码子都是三个一组;所以顺序表达下去当表达到BamHI时,刚刚好不移码;BamHI的TCC直接加目的基因ATGXXX就可以正確表达了。

然而当我们不选BamHI而选择EcoRI时发现变为了GGA ATT C+ATGXXX,如果我们直接不加以改造就成了CAT GXX X……这样我们的目的基因就移码了,而如果不需要迻码就需要在酶切位点之后添加2个五个碱基分别是什么变为GGA ATT CXX ATGXXX,这样我们的目的基因就不会移码了:


按照上述规则大家可以试试是否能嶊出各个酶切位点的移码规则!

到这里我们就把质粒构建的知识基本讲完啦。

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