internal promoter
内部启动子
内部启动子
内部启动子（internal promoter）:
5SrRNA、tRNA的启动子位于转录起始点下游
基于40个网页-
5S rRNA和tRNA基因的启动子是内部启动子 rRNA和tRNA基因的启动子是内部启动子 (internal promoter)位于转录起始位点的下游 ， promoter)位于转录起始位点的下游 都由两部分组成 3.
基于2个网页-
称为内部启动子
牛泡沫病毒两类启动子活性的比较和机制探讨----
除5′LTR启动子 之外的第二类启动子［4～6］。该启动子位于env基因内部、调节蛋白编码区上游 ，称为内部启动子(Internal promoter, IP)。本实验室也已从BFV基因组的相应位置克隆到 了有活性的IP片段。本文通过瞬时表达，分析比较了BFV
基于2个网页-
内源性启动子
内源性启动子
基于1个网页-
内部变革促进者
内部启动子载体
内部启动子
&2,447,543篇论文数据，部分数据来源于
internal promoter
【遗传学】内启动子
以上来源于：《21世纪大英汉词典》
Then it emphatically discusses types of new problems, sources of the problem driven search, and innovational backgrounds of internal change promoter in the model.
研究表明，管理创新创造阶段是内部变革促进者根据内外部环境对新问题进行驱动式探索的阶段；
Then the shelter promoter whips out a 1969 Internal Revenue Service ruling declaring that since the value of the annuity isn't known, the gain can't be taxed up front.
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正常中国人及内源性高甘油三酯血症患者内皮脂酶基因启动子-384A＞C多态性的研究
【摘要】：目的研究内皮脂酶基因启动子-384AC 位点多态性与正常汉族中国人及内源性高甘油三酯血症(HTG)患者血脂及载脂蛋白水平是否存在关联,为探讨 HTG 发病的分子遗传基础提供依据。方法采用聚合酶链反应-限制性片段长度多态性分析法(PCR-RFLP)对214例正常人和 103例内源性高甘油三酯血症患者内皮脂酶基因-384AC 位点多态性进行分析,采用酶法和单向免疫扩散法对血脂和载脂蛋白水平进行测定。结果中国人内皮脂酶基因-384AC 多态位点 C 等位基因频率为0.178,与日本人的0.119和日裔美国人的0.115存在显著差异(P0.01,P0.01)。未见正常人和内源性高甘油三酯血症患者之间 C 等位基因频率存在差异(P0.05)。正常中国人 C 等位基因携带者(A/C 及 C/C 型者)血清 TC、LDL-C 及 nHDL-C 水平均较 A/A 基因型者显著升高(5.23 ±0.74 mmol/L vs 4.93±0.74 mmol/L,P=0.025;3.27±0.74 mmol/L vs 2.98±0.80 mmol/L,P= 0.038;3.81±0.73 mmoL/L vs 3.49±0.85 mmol/L,P=0.031);进一步按性别划分为男女亚组后,这种差异仅在女性亚组存在。未见该多态性与 HDL-C 及其它血脂和载脂蛋白水平存在关联。对内源性高甘油三酯血症患者的研究未发现-384AC 多态性与血脂及载脂蛋白水平有关。结论内皮脂酶基因-384AC 多态性与成都地区正常汉族中国人血清 TC、LDL-C 及 nHDL-C 水平有关联,但未见其与内源性高甘油三酯血症患者血脂及载脂蛋白水平有关。
【作者单位】：
【分类号】：R589【正文快照】：
正常中国人及内源性高甘油三酯血症患者内皮脂酶基因启动子-384A＞C多态性的研究@黄燚$四川大学华西第二医院实验中心
@白怀$四川大学华西第二医院实验中心
@范平$四川大学华西第二医院实验中心
@刘瑞$华西医院人类疾病相关多肽研究室
@刘宇$四川大学华西基础
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含沙门菌内源启动子新型双功能表达载体的构建及其在猪瘟病毒疫苗研究中的应用求
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含S盒的诱导型启动子及构建和在基因工程上的应用
来源：广搜网
公益为中国网民提供数字化信息
&&&&发明人：何水林 黄定全 王小燕 王芳权方开星 刘志钦 官德义 牟少亮（摘要：本发明提供了一种含S 盒的诱导型启动子及构建和在基因工程上的应用，所述诱导型启动子至少含有SEQIDNo.1 所示的核苷酸序列，构建方法是将双子叶植物欧芹中鉴定的应答逆境胁迫的S 盒与CaMV35S 启动子核心序列融合构建而成。本发明的诱导型启动子在转基因水稻中可较好地应答水稻稻瘟病菌侵染、稻纵卷叶螟取食和机械损伤，对已经分离鉴定的具有抗病作用的小分子化合物的处理也有明显的应答活性，而对干旱、低温、高温等非生物逆境处理的应答活性比较弱或者不表达。该诱导型启动子在单子叶植物水稻抗病、虫基因工程中具有十分重要的应用价值，其转基因植物株系在诱导植物抗病的小分子化合物高通量筛选中也有重要的应用价值。）
21. 一种含S 盒的诱导型启动子，其至少含有SEQ ID No.1 所示的核苷酸序列。2. 一种如权利要求1 所述的诱导型启动子的构建方法，其特征在于：将双子叶植物欧芹中鉴定的应答逆境胁迫的S 盒与CaMV35S 启动子核心序列融合，构建成诱导型启动子。3. 根据权利要求2 所述的诱导型启动子的构建方法，其特征在于：所述S 盒的核苷酸序列为CAGCCACCAAAGAGGACCCAGAA。4. 根据权利要求2 所述的诱导型启动子的构建方法，其特征在于：所述CaMV35S 启动子核心序列为TCGACCGCAAGACCCTTCCTCTATATAAGGAAGTTCATTTCATTTGGAGAGGAC。5. 一种含有权利要求1 所述的诱导型启动子或由权利要求2 所述的方法构建的诱导型启动子在单子叶植物水稻抗病、虫基因工程中的应用。含S 盒的诱导型启动子及构建和在基因工程上的应用[0001] 技术领域本发明涉及一种诱导型启动子及构建和在基因工程上的应用，更具体地涉及了一种含S 盒的诱导型启动子在水稻单子叶植物水稻抗病虫基因工程中的应用，属于植物基因工程技术领域。[0002] 背景技术真菌、细菌、病毒等病原微生物的侵染常造成各种农作物产量和质量的下降。培育和推广抗病品种是防治作物病害、保证作物稳产高产最安全有效的途径。利用植物自身抗病基因，通过常规育种和分子标记辅助育种方法已培育了许多抗病新品种。然而，抗性基因在种属间利用具有一定的局限性。转基因方法可克服上述局限，为作物抗病育种开辟了一条新途径，也是植物种质创新的重要途径之一。目前，在转基因技术中所使用的启动子大多数为组成型启动子，如果使用植物组织特异性启动子或病原诱导的植物启动子不仅会获得目的产物、达到预定目标，而且也不会产生副作用。[0003] 植物基因启动子是位于结构基因5’端上游区、含有顺式作用元件的DNA 序列，决定着下游基因转录的特异性、方向和效率，是转录调控的中心。高等植物启动子区域存在各种特征元件，包括转录起始位点、TATA 盒、起始因子和不同的顺式作用元件等。其中，TATA框是依赖于RNA 聚合酶II 转录所必需的，决定着转录起始，并调控着上游激活蛋白的行为；起始因子的功能与TATA 盒相似，可影响转录的方向和起始点的定位，但一般不能改变启动子内包含2 个核心序列因子的TATA 活性。植物的许多性状与启动子的结构及其调控方式密切相关。因此，研究启动子不仅可以为基因工程提供重要的调控元件，也可促进从遗传分子基础上发掘具有重要利用价值的植物新资源。[0004] 根据植物启动子的转录模式可将其分为组成型启动子、组织特异型启动子和诱导型启动子。[0005] 组成型启动子调控的基因表达不受时空限制和某种物质的诱导而在植物中表达出来。双子叶植物中常用的组成型启动子花椰菜花叶病毒(CaMV)35S 启动子是目前植物基因工程中使用最多的启动子，它驱使转基因产生组成型表达。它是异源病毒型启动子，在转基因植物中具有较高的表达活性。组成型启动子可应用于评价一个基因的生物学功能、转基因表达数量及其活性，但在改良转基因作物的实际应用中的主要问题是：(1) 组成型启动子驱动的基因在植物各组织中均有不同程度表达，它驱动外源基因在植物的各种组织和所有发育阶段都会表达，产生大量异源蛋白或代谢产物在植物体内积累，打破了植物原有的代谢平衡，增加了植株的代谢负担，有些产物甚至对植物的生长发育有毒，造成了物质和能量上的巨大浪费，同时还会改变植物的形态，影响植物正常的生长发育，甚至导致死亡；(2) 植物所有细胞可能会全部进入防御模式，即使在无病原侵染时仍进行抗病反应；(3) 组成型启动子调控表达的转基因产物可在人和动物食用的植物组织中积累，但是生物安全性要求不能有转基因产物。[0006] 如果用组织、器官特异型和病原诱导型启动子取代组成型启动子，使外源基因能够定时、定点、定量地在植物中表达，可以克服组成型启动子带来的问题。因此，组织特异型启动子和病原诱导型启动子的研究与应用是植物基因工程的重要内容和当今国内外研究的热点。利用启动子的最好方法可能是利用一个内源抗性基因启动子，这样既可以减少植物的代谢负担，又可以避免植物防御反应的假性激活。[0007] 比组成型表达和组织特异型表达更理想的表达模式是，只在需要的时间和地点表达而且仅在感染部位启动抗病相关基因表达。病原诱导型启动子能达到上述较为理想的结果，防止“逃离细胞死亡”现象出现，消除了对植物生长和发育影响的副作用。一种理想的病原诱导型启动子应迅速被广谱野生型病原侵染所激活，并有广谱抗病性。然而由于植物对不同病原菌采取了不同的防御机制，许多重要植物抗病分子机制尚不明确，所以，目前分离的大多数病原诱导型启动子很少能满足上述要求，仍然存在轻微的“逃离细胞死亡”的现象。因此，迫切需要分离或人工构建理想的病原诱导型启动子。植物抗病机制研究、转录组学和启动子克隆技术的发展，为人工构建新的病原诱导型启动子奠定了基础。[0008] 当前可使用的病原诱导型启动子缺乏的主要原因是分离各种天然的病原诱导型启动子较少。与天然病原诱导型启动子相比，人工构建病原诱导型启动子不仅更具有广谱性，而且可根据不同目的进行灵活选择，如消除启动子表达元件，可改变启动子的强度和病原诱导表达基因的数量和质量。研究发现，启动子元件在不同植物品种中防御信号是相对保守的。因此，通过收集各种植物启动子元件可以人工构建病原启动子。[0009] 启动子组件有许多不同的类型，包括病原诱导型作用元件、组织特异型作用元件、细胞特异型作用元件和人工组建启动子所需的最小启动子区段。其中病原诱导型作用元件在抗病方面是最重要的。已知的植物转录因子家族中有许多在抗病反应中起重要作用的成员，其中包括WRKYs、ERFs、bZIPs、Mybs、Dofs、bHLHs、Whirly、SR 和DBP1 等。这些转录因子与PR 基因特异结合的位点即顺式作用元件，对于组建启动子作用元件是非常有用的。[0010] 在植物防卫反应相关基因的表达过程中，顺式作用元件通过与转录因子的互作发挥着重要调控作用: 环境刺激经过一系列信号转导、传递后，激活防卫相关转录因子与特异顺式作用元件的互作，从而实现相关防卫功能基因的表达。目前，通过转基因技术提高植物的抗逆性已成为植物基因工程中重要的研究策略。鉴于顺式作用元件的上述重要调控作用，与早期的组成型表达的抗性基因的转基因应用相比，使用诱导型启动子介导的抗性基因无疑具有多方面的优势，因此鉴定抗性相关( 特别是细菌性病原相关) 诱导型启动子已成为目前植物分子生物学研究的热点。迄今，已经发现了几种受不同病原诱导的GCC box(AGC—CGCC) 和受创伤、部分病原诱导的W box([T]TGAC[C/T]。在防御基因启动子区经常还含GCC box ，它与调控茉莉酸、激发子诱导表达的JERE 元件(AGACCGCC) 和调控真菌诱导表达的S box(AGCCACC) 相似。S 盒（核心序列AGCCACC）是2000 年Kirsch等人从荷兰芹EL17 基因启动子发现了一个新的受病原真菌诱导的顺式作用元件，是一个类GCC(AGCCGCC) 元件，与茉莉酸应答元件JERE（AGACCGCC）、干旱应答元件DRE/CRT（TACCGACAT）都具有高度相似性。这几个顺式作用元件都能特异性结合于AP2/EREBP 转录因子。[0011] 目前，使用组成型启动子的基因工程植物中，转入抗病相关基因的持续表达可能会引起无法控制的防御反应，例如“逃离细胞死亡”。利用转基因的方法来提高作物产量面临的另一个主要问题是启动子引起的背景表达，带有开关并在病原侵染位点能迅速短暂地诱导抗病基因表达的启动子是比较理想的启动子。另外，内源启动子的分离与利用可以减少背景表达，但是某些启动子的调控元件通常既调控病原诱导基因的表达又调控背景表达，因而，理想的病原诱导特异型启动子的分离迄今还比较困难。然而，随着对启动子作用元件和抗病调控机制研究的深入发展，成功地分离或人工构建更理想启动子的可能性会越来越大。[0012] 研究表明，将马铃薯、拟南芥、芫荽菜、长春花等双子叶植物中鉴定的S 盒与CaMV35S 核心启动子（-46 ～ +8bp）融合所构建成的诱导型启动子能在烟草、拟南芥等原生质体中瞬间表达或在转基因植株中被病原菌或诱发子处理后驱动GUS 基因表达。该结果一方面表明S 盒元件在诱导表达中的重要作用，另一方面也说明该顺式作用元件的结合蛋白及其上游的信号传导途径在上述多种双子叶植物中具有保守性。但是，迄今仍缺乏在水稻以及单子叶植物中S 盒等元件应答病原菌或激发子的直接证据。进一步在水稻中开展S 盒应答病原菌、ET、JA 信号的鉴定和应用研究，具有十分重要的意义：（1）可望找出应答病、虫的顺式作用元件，以这些元件为诱饵，可进一步分离其相应的转录因子基因；（2）由于顺式作用元件离开其宿主启动子仍可保留其应答病原菌或诱发因子的功能，可利用这些元件与合适启动子核心序列（如CaMV35S、Act1 等基因启动子的核心序列），构建响应病原菌侵染或JA（昆虫取食）的诱导型启动子。[0013] 发明内容本发明提供了一种含S 盒的诱导型启动子及构建和在基因工程上的应用，将大力促进水稻抗病基因工程的发展与应用。[0014] 本发明的含S 盒的诱导型启动子，其至少含有SEQ ID No.1 所示的核苷酸序列。[0015] 构建方法如下：本发明将双子叶植物欧芹中鉴定的应答逆境胁迫的S 盒（其序列为CAGCCACCAAAGAGGACCCAGAA）与CaMV35S 启动子核心序列（-46 ～ +8bp）融合，构建成诱导型启动子。所述CaMV35S 启动子核心序列为TCGACCGCAAGACCCTTCCTCTATATAAGGAAGTTCATTTCATTTGGAGAGGAC。[0016] 本发明的含S 盒的诱导型启动子本底表达低、应答速度快、持续时间长、表达强度适中。将上述的诱导型启动子与抗病（虫）等基因结合，构建成转化载体转化水稻，可使获得的转基因水稻的外源抗性基因诱导表达，既发挥抗性基因在抗病（虫）中的作用，又可避免由于抗性基因过量表达导致的物质、能量的浪费和抗性基因表达产物对转基因植物细胞本身的不利影响。[0017] 本发明的显著优点：本发明的含S 盒的诱导型启动子在转基因水稻中可较好地应答水稻稻瘟病菌侵染、稻纵卷叶螟取食和机械损伤，对已经分离鉴定的具有抗病作用的小分子化合物（如乙烯利、苯丙噻二唑、茉莉酸甲酯）的处理也有明显的应答活性，而对干旱、低温、高温等非生物逆境处理的应答活性比较弱或者不表达。该诱导型启动子在单子叶植物水稻抗病、虫基因工程中具有十分重要的应用价值，其转基因植物株系在诱导植物抗病的小分子化合物高通量筛选中也有重要的应用价值。附图说明[0018] 图1 为瞬间表达载体pBT10-GUS 的质粒图谱；图2 为pDNOR-207 入门载体；图3 为pMDC-163 目的载体；图4 为瞬间表达载体pBT10-GUS 的结构图；图5 为转基因水稻T0 代植株的目的片段PCR 检测；1-13 为转基因植株扩增产物条带，14 为野生型扩增条带；15 为质粒扩增条带；图6 为稻瘟病菌侵染T1 代植株5-7 天后GUS 染色的结果；其中1 表示5 天后，2 表示6天后，3 表示7 天后，CK 为对照；图7 为稻纵卷叶螟取食T1 代植株叶片不同时间段后GUS 组织化学染色的结果；其中1表示3h 后，2 表示5h 后，3 表示24h 后。[0019] 具体实施方式1 载体构建过程和转1.1 材料与方法材料1.1.1.1 菌株和载体：大肠杆菌（Escherichia coli ）DH5а 和DB3.1（福建农林大学生命科学学院实验室保存）；根癌农杆菌（Agrobacterium tumefaciems ）EHA105 菌株（福建农林大学生命科学学院实验室保存）；pBT10-GUS 瞬间表达载体（见图1）由（Weisshaar 教授惠赠，Sprenger-Haussels and Weisshaar, 2000）；pDNOR-207 入门载体（见图2）和 pMDC-163目的载体（见图3）均购自Invitrogen 公司。[.1.2 生化试剂：DNA 快速回收试剂盒和质粒提取试剂盒购自上海生工生物工程有限公司，XbaI、SacI、SpeI、PfuTaq 酶、rTaq 酶、T4 连接酶和dNTP 等购自TaKaRa 公司，Gateway 载体构建试剂盒购自Invitrogen 公司，庆大霉素、卡那霉素、利福平、羧卞青霉素、潮霉素、X-gluc 等为Sigma 公司产品。其它化学试剂均为国产化学纯。[.1.3 引物：引物序列由上海生工公司合成，如表1 所示。[0022] 表1 引物名称和核苷酸序列1.1.1.4 序列合成：根据Ohme-Takagi and Shinshi 中的S 盒序列，（其中划线碱基为附加上去的，使正反链退火合成的双链两侧分别带有XbaI 和SpeI 两个限制性酶切位点）分别委托上海博亚生物技术公司合成，如表2 所示。[0023] 表2 合成链的名称和核苷酸序列1.1.1.5外植体：粳稻品种日本晴（Oryza sativa ssp.japonica ）的成熟胚所诱导愈伤组织为转化所用外植体。[.1.6 生物和非生物胁迫处理：稻瘟病菌（菌株为guy11 ）分生孢子、稻纵卷叶螟幼虫。[0025] 方法：1.1.2.1 构建含二倍盒的诱导型启动子瞬间表达载体：将1.1.1.4 中合成的带有XbaI和SpeI 限制性酶切位点的S 盒双链寡核苷酸片段插入pBT10-GUS 的相应酶切位点上( 如图4 所示)，获得含有单拷贝S 盒的载体pBT10-X-GUS（X-S 盒，下同），将载体pBT10-X-GUS分别用XbaI /SacI 和SpeI /SacI 组合酶切（37°酶切3-5h），回收含S 盒的片段通过使用T4连接酶进行连接、转化大肠杆菌DH5а 和验证，从而获得带有2 个S 盒拷贝串联的瞬间表达载体pBT10-XX-GUS。[.2.2 构建含二倍盒的诱导型启动子植物表达载体：根据上述1.1.2.1 中构建好的瞬间表达载体pBT10-XX-GUS 上二倍的S 盒和其下游相邻的CaMV35S 核心启动子（-46 ～ +8bp）片段设计Gateway 内侧引物，运用Gateway 载体构建技术（参考Invitrogen公司GatewayTM 技术）构建植物表达载体，以pDNOR-207 载体为入门载体，pMDC-163 为目的载体从而获得可用于植物遗传转化的诱导表达载体pMDC-XX-163，表达载体转化农杆菌菌株EHA105 备用（取1ug 左右的pMDC-XX-163 载体质粒加入到EHA105 感受态细胞中，混匀后，冰浴30min ；液氮速冻3min ；取出后37℃水浴5min ；冰浴2min ；加入400ul 不加抗生素的YEP液体培养基，28℃，180rpm 摇培4h ；取出后涂在含有50mg/L 卡那霉素和利福平的YEP 固体培养基，28℃培养到形成单菌落，挑取单克隆菌落进行PCR 验证）。[.2.3 植物表达载体转化农杆菌以及对水稻的遗传转化：用接种针挑取含目的基因pMDC-XX-163 的农杆菌EHA105 菌液，划线于浓度为50mg/L 卡那霉素和利福平的AB固体培养基，置于28℃黑暗培养3-4d。从上述AB 培养基上挑取一个单克隆于AAM 液体培养基中置于28℃摇床，直至OD 值为0.1。取脱壳的日本晴种子用70% 乙醇消毒1-2min，无菌水冲洗5 遍，接着用2.5% 次氯酸钠溶液（每50ml2.5% 次氯酸钠溶液含一滴Tween-20）消毒15min，用无菌水冲洗5 遍，后置于灭菌过的滤纸上晾干，再接到N6D+2.4D 诱导培养基，置于32℃光照培养箱中光照培养5-7d 诱导产生愈伤组织。取出经诱导培养的种子，拔芽后浸入上述OD 为0.1 的AAM 菌液中（含AS 10-20mg/L）10min，期间轻轻晃动，后用滤纸吸干愈伤表面的菌液。将愈伤转移到2N6-AS 培养基上含AAM 液体培养基的无菌滤纸上，25℃黑暗共培养3d。将共培养后的愈伤于无菌水中清洗5-6 遍直至无混浊出现，接着用含500mg/L 羧苄青霉素的无菌水清洗30min，用滤纸吸干，将愈伤置于N6D 筛选培养基上（含400mg/L羧苄青霉素、2mg/L 2.4-D 和50mg/L 的潮霉素）32℃光照筛选培养2 周。将经筛选培养的愈伤转移到RE- Ⅲ培养基上（含0.02mg/Lα-NAA、2mg/L KT、50mg/L 潮霉素和400mg/L 羧苄青霉素）32℃光照分化培养2-3 周。取分化出来的小苗转移到HF 生根培养基上30℃诱导生根培养1 周。[.2.4 转基因水稻DNA 的提取以及分子检测：水稻基因组DNA 的提取参照文献（sambrook and russel, 2002）方法。用Gateway 内侧特异引物序列对其进行PCR 检测（如图5 所示），图中以表达载体pBT10-XX-GUS 为阳性对照，以非转基因水稻为阴性对照，从图中可以看出1 ～ 13 出现与阳性对照一样的PCR 条带，说明均为阳性转基因植物。[.2.5 转基因植株生物和非生物胁迫处理：取T1 代饱满种子经含潮霉素的水溶液（浓度50mg/L）抗性筛选每天12h 光照、25℃、培养7-8d 后取能正常萌发的绿色小苗种到盛有土壤的塑料小花盆中，以尿素和有机肥作为基肥，出苗后追肥两次尿素。3-4 叶期时采用喷雾接种法接种浓度为105 个/mL 的稻瘟病菌（菌株为guy11 ）分生孢子后移至25℃和80% 湿度的温室培养数天。稻纵卷叶螟幼虫取食T1 代转基因植株5-6 叶期的幼嫩叶片不同时间段后将稻纵卷叶螟幼虫从叶片上移走。[.2.6 组织化学染色：生物胁迫和非生物胁迫应答结果检测按照(Jefferson,1987) 的方法配置GUS 染色液，于-20℃避光储存。经上述生物和非生物胁迫处理后剪取5-6cm 叶片于37℃放置12h 再用70% 乙醇脱色，期间更换乙醇数次。待脱色完全后拍取其照片。[0031] 2 S 盒对稻纵卷叶螟和稻瘟病等生物逆境胁迫的应答T1 代S-GUS 转基因植株生长到3-4 叶期时被稻瘟病（菌株为guy11 ）分生孢子侵染后培养5-7 天分别检测GUS 报告基因的表达情况发现，随着接种后培养时间的增加病害逐渐变得严重，而GUS 的表达量也随着增加，尤其是病害严重的区域。在未经稻瘟病菌侵染的T1代同龄植株除靠近用剪刀剪取部位外叶片其他部位未检测到明显的GUS 活性（见图6）。[0032] 用稻纵卷叶螟幼虫取食T1 代转基因水稻5-6 叶期植株的幼嫩叶片，从开始取食时开始计时3h、5h、24h 后轻轻将稻纵卷叶螟从叶片上移走。剪取叶片5-6cm 浸入GUS 液中于37℃ 12h 后分别检测上述不同时间段取食后GUS 基因表达量的变化，在稻纵卷叶螟取食处能检测到明显的GUS 活性，随着取食时间延长受损区域增加GUS 表达相应的增加（见图7）。[0033] 3 结论将含有S 顺式作用元件的35S 启动子连接上GUS 报告基因导入水稻，在稻纵卷叶螟和稻瘟病等生物逆境胁迫下，观察到转基因水稻中GUS 得到了一定的表达，这说明水稻中也存在能识别S 元件（或含S 核心序列的元件）、并与之结合促使报告基因GUS 表达的AP2/EREBP 类转录因子。 福建农林大学 含S 盒的诱导型启动子及构建和在基因工程上的应用 1 1 77 DNA 人工序列 1cagccaccaa agaggaccca gaatcgaccg caagaccctt cctctatata aggaagttca 60tttcatttgg agaggac 77序 列 表CN
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发明人：何水林 黄定全 王小燕 王芳权方开星 刘志钦 官德义 牟少亮
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